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口蹄疫常用检测方法

时间:2023-08-26 百科知识 版权反馈
【摘要】:3.10 口蹄疫常用检测方法3.10.1 口蹄疫非结构蛋白间接酶联免疫吸附试验1.用途 FMD 3ABC-I-ELISA试剂盒检测FMDV非结构蛋白3ABC抗体。该试剂盒不受血清型影响,适用于活畜进出口调运、疫区净化检疫和群体无症状感染评价,区分感染和免疫动物。可疑和阳性样品应进行复测,复测为可疑和阳性时,应判为阳性。抗体滴度以能阻断50%病毒抗原的血清稀释度表示。

3.10 口蹄疫常用检测方法

3.10.1 口蹄疫非结构蛋白间接酶联免疫吸附试验(FMD 3ABC-I-ELISA)

1.用途 FMD 3ABC-I-ELISA试剂盒(中国农业科学院兰州兽医研究所生产)检测FMDV非结构蛋白3ABC抗体。该试剂盒不受血清型影响,适用于活畜进出口调运、疫区净化检疫和群体无症状感染评价,区分感染和免疫动物。本诊断试剂盒可测出牛感染后长达480天(16个月)的FMDV感染抗体。

2.原理 FMD 3ABC-I-ELISA试剂盒采用间接ELISA模式。用3ABC基因表达蛋白包被ELISA板,洗板封闭。加入待检血清样品,如果血清样品中有3ABC抗体,与ELISA板上3ABC蛋白结合,形成抗原-抗体复合物,再与酶标二抗结合,加入底物后,就会出现颜色反应。如果待检样品为阴性,就不能形成抗原-抗体复合物,酶标二抗不会结合,因此就不显色。

3.注意事项 冰冻血清样品应充分融化,且应混合均匀。

血清稀释液和底物应平衡至室温应用。底物A在4℃为结晶状态,需要在室温或37℃水浴状态溶解后应用。最好在血清稀释板上稀释血清,以减少操作误差。

应使用相同的加样器加样,以保证加样量的准确,减少试验误差。

多道微量移液器所用的吸头应为同一规格和型号,避免加样误差。

应使用自动或手动连续洗板系统洗板。

加样先后次序应该一致,保证作用时间一样。

底物作用时间到后,如果颜色较浅,可适当延长作用时间。

4.试剂准备 将试剂盒配备的25倍浓缩PBST用无离子水或蒸馏水做1:25倍稀释即可。

5.操作步骤

一是待检血清样品和阳性、阴性对照血清用血清稀释液1:21稀释(120μl血清稀释液加血清6μl),每孔加入100μl,阴、阳性对照血清样品平行加两孔,用封口膜封口,37℃结合30分钟。

二是取掉封口膜,每孔加满洗涤液,洗涤5次,最后一次拍干。

三是用血清稀释液按1:1000稀释酶标二抗,每孔加入100μl,用封口膜封口,37℃结合30分钟。

四是取掉封口膜,每孔加满洗涤液,洗涤5次,最后一次拍干。

五是将底物A按1:50比例(体积比)稀释于底物B中(1毫升底物B中加入20μl底物A),吹打混匀,每孔加入100μl,封口膜封口,37℃避光作用10~15分钟。

六是每孔加入100μl终止液。

七是轻轻摇振混匀,测定波长450nm吸光值(OD450值)。

八是阳性对照平均OD值应大于0.6,阴性对照平均OD值应小于0.2。

九是结果计算。样品效价为(OD样品-OD阴性)/(阳性-OD阴性)。

6.结果判定若效价<0.2,为阴性;效价在0.2~0.3之间为可疑;效价>0.3为阳性。可疑和阳性样品应进行复测,复测为可疑和阳性时,应判为阳性。

3.10.2 口蹄疫抗体液相阻断酶联免疫吸附试验(LB-ELISA)

1.原理 口蹄疫抗体液相阻断酶联免疫吸附试验(LB-ELISA)诊断试剂盒(中国农业科学院兰州兽医研究所生产)是将预先滴定好的固定量病毒抗原与被检血清首先在液相中反应,然后将抗原抗体复合物转移到包被了FMD型特异性抗体的ELISA板中,没有完全被血清抗体阻断的病毒抗原被ELISA板中的抗体捕获,亦与随后加入的豚鼠抗血清中的抗体结合,再通过兔抗豚鼠IgG酶结合物和底物溶液显色。按试验孔呈现的颜色与抗原对照(未加血清)孔呈现颜色相比较判定结果。抗体滴度以能阻断50%病毒抗原的血清稀释度表示。口蹄疫液相阻断ELISA诊断试剂盒液相阻断ELISA是国际兽疫局(OIE)推荐的检测口蹄疫病毒抗体的标准方法。

2.试剂与器材

试剂

捕获抗体:兔抗口蹄疫病毒146S血清

检测抗体:豚鼠抗口蹄疫病毒146S血清

病毒抗原及病毒对照抗原:用BEI灭活的病毒细胞培养物

标准阳性血清和阴性血清

酶结合物:兔抗豚鼠IgG-辣根过氧化物酶结合物

底物溶液:邻苯二胺(OPD)/H2O2溶液

终止液:1.25mol/L H2SO4

缓冲液:

包被缓冲液:0.05M Na2CO3/NaHCO3,pH9.6

稀释液:0.05%(V/V)Tween-20加入0.01M PBS,pH7.4(PBST)

豚鼠抗血清稀释液:10%牛血清-5%兔血清-PBST

洗涤液:0.01M PBST,pH7.4

仪器材料

ELISA板:96孔平底聚苯乙烯ELISA板

抗原抗体反应板:96孔U型底聚苯乙烯微量板

移液器:0.5~20μl,5~40μl,50~200μl,200~1000μl可调移液器各一把,8道或12道移液器1把,移液槽5~6个,配套移液枪尖若干。

生化培养箱1个

酶标仪:492nm波长滤光片

吸水纸巾

3.操作步骤

(1)在U型血凝板上按50μl/孔量用PBST工作液将待检血清从1:4开始做2倍稀释至1:512。然后每孔加入50μl用PBST稀释到使用浓度(1:5)的病毒抗原,震荡混匀,4℃过夜。加入病毒抗原后血清的实际稀释度变为从1:8开始的2倍连续稀释度。

(2)将血清-抗原复合物移入ELISA板内,每孔50μl,37℃,60分钟温浴。

(3)用PBST洗板5次。每孔加50μl用豚鼠抗血清稀释液稀释至使用浓度(1:1600)的豚鼠抗血清,37℃,60分钟温浴。

(4)用PBST洗板5次,每孔加50μl用PBST稀释至使用浓度(1:2000)的兔抗豚鼠IgG-辣根过氧化物酶结合物,37℃,60分钟温浴。

(5)用PBST洗板5次,每孔加50μl邻苯二胺(OPD)/H2O2溶液,37℃,15分钟温浴后,每孔再加入50μl终止液终止反应,以492nm波长测定OD值。

4.对照的设立与结果的判定

一是标准阳性、阴性血清对照:用标准阳性血清替代待检血清进行上述试验,OD值应随着稀释度的增加而有规律地升高,以显示试验系统的准确性。阳性血清滴度1:2048±1个滴度、阴性血清滴度小于1:4成立。

二是病毒抗原对照:每次试验每块板设4孔用PBST稀释至使用浓度(1:5)的病毒抗原对照,不加待检血清,其他步骤完全同上述程序。病毒抗原对照至少2孔的OD值在1.0~1.5时,试验成立。

三是结果判定:以病毒抗原对照平均OD值的50%为临界值,被检血清OD值大于临界值的孔为阴性孔,小于临界值的为阳性孔,阳性孔的OD值等于临界值时所对应的稀释度为该份血清的抗体滴度。如果病毒抗原对照平均OD值为1.2,则其50%为0.6。若一待检血清在1:128时OD值为0.6,则该份待检血清的抗体滴度为1:128。抗体滴度<16阴性,>32阳性,16~32可疑。ELISA抗体滴度与免疫动物攻毒保护的关系:牛、羊≥1:128 100%保护,<16不保护,22~90 50%保护。

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