心血管活动的调节及减压神经放电

实验二　心血管活动的调节及减压神经放电

实验目的

（1）学习减压神经放电的引导，同时记录减压神经集群放电与动脉血压。

（2）观察部分神经－体液因素对动脉血压和减压神经放电的影响。

（3）观察拟胆碱药和拟肾上腺素药及其阻断药对动脉血压的影响，初步探讨神经－体液因素调节动脉血压的机制。

实验原理

人体动脉血压能维持相对稳定，其原因是体内存在压力感受性反射。在人的颈动脉窦和主动脉弓处存在能感受血压变化的压力感受器，当动脉血压发生变化时，这些压力感受器感受的刺激也发生相应的变化，通过窦神经和主动脉神经传入延髓心血管系统，使压力感受性反射增强或减弱来维持动脉血压相对稳定。在上述完整的反射弧中，家兔的主动脉神经在颈部自成一束，与迷走神经伴行，称为减压神经或降压神经。减压神经是传入神经，当主动脉弓处血压升高时，主动脉管壁被动扩张，减压神经传入冲动频率增多；反之，传入减少。本实验通过直接记录家兔动脉血压和减压神经放电，观察神经－体液因素对动脉血压和减压神经放电的影响，并使用相应体液因素的阻断剂进行干预，初步探讨神经－体液因素调节动脉血压的机制。

实验对象

家兔。

实验器材与药品

台秤、兔手术台、注射器（1mL、20mL各一个）、哺乳类动物手术器械1套、BL－420生物信号采集与处理系统（或其他生物信号采集与处理系统）、引导电极、血压换能器、三通阀、铁架台2个、动脉夹2个、动脉插管、玻璃分针、棉线、20%氨基甲酸乙酯溶液、0．5%肝素盐水溶液、1∶10 000肾上腺素、1∶10 000去甲肾上腺素、0．2%普萘洛尔注射液、生理盐水溶液、酚妥拉明、0．1%阿托品、1∶100 000乙酰胆碱溶液。

实验步骤

1．手术准备

（1）家兔称重后，耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯溶液（按5mL／kg剂量）进行麻醉。

（2）将家兔仰卧位固定于兔手术台上，固定四肢，并用棉线钩住兔门齿，将线拉紧缚于兔手术台铁柱上，充分暴露颈部。

（3）减压神经和颈总动脉的分离：剪去颈部手术野的毛，于喉下正中部位切开皮肤5～7cm，止血钳行钝性分离，暴露气管及左颈总动脉。先不破坏颈动脉鞘，仔细观察迷走神经与交感神经之间一条最细的神经即为减压神经（图4－3）。用玻璃分针轻轻分离左侧减压神经2～3cm，其下穿两根用生理盐水浸泡过的棉线备用；分离右颈总动脉2～3 cm，穿双线备动脉插管用。

图4－3　家兔颈总动脉、迷走神经、交感神经及减压神经解剖位置模式图

（4）颈总动脉插管：塑料动脉插管内预先充满肝素盐水溶液，并与血压换能器连接，在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面预先穿一根丝线备用。在结扎和夹闭之间的动脉段，用眼科剪在靠近结扎（远心端）处动脉壁剪一个“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。如有较多血液进入插管内，可经三通管向管内推入少量肝素盐水溶液（特别注意正确使用三通管）。

2．仪器连接

（1）将血压换能器固定于铁架台上，其位置应与心脏在同一平面。

（2）将血压换能器的输出端与BL－420生物信号采集与处理系统的第二输入通道连接。

（3）将分离好的减压神经轻轻挂放在引导电极上，滴加液体石蜡以保持神经的湿润，引导电极的信号输入线接入BL－420生物信号采集与处理系统的第一输入通道接口。

（4）在BL－420生物信号采集与处理系统进行参数设置，信号输入→通道1→神经放电；信号输入→通道2→压力。连续记录显示模式；第1通道放大倍数为200～500、滤波选择“1 000～2 000”；第2通道放大倍数为200～500、滤波选择“DC”。

实验观察项目

（1）同时记录家兔血压波形与减压神经的群极性放电，并采用监听获得减压神经放电的声音，观察血压与减压神经放电之间的关系。

（2）牵拉同侧颈总动脉刺激颈动脉窦压力感受器，夹闭颈总动脉减少颈动脉窦压力感受器的刺激，观察动脉血压及减压神经放电的变化。

（3）刺激迷走神经外周端模拟迷走神经兴奋状态，观察血压及减压神经放电的变化。

（4）按一定顺序耳缘静脉注射肾上腺素、去甲肾上腺素、乙酰胆碱溶液，以及相应受体的阻断剂，观察血压的变化，初步探讨神经－体液因素影响动脉血压的机制。

①静脉注射肾上腺素0．1mL／kg，去甲肾上腺素0．1mL／kg，观察血压变化。

②缓慢注入酚妥拉明（α肾上腺素受体拮抗药），用药2min再给肾上腺素或去甲肾上腺素，观察血压变化。

③静脉注射0．2%普萘洛尔注射液（β肾上腺素受体拮抗药）0．5mL／kg（缓慢注入约2min以上），5min后再给予肾上腺素或去甲肾上腺素，观察血压变化。

④静脉注射1∶100 000乙酰胆碱溶液0．1mL／kg，观察血压变化。

⑤大剂量阿托品（1∶100，0．1mL／kg）静脉注射后，再给大量乙酰胆碱溶液（1∶100，0．1mL／kg），观察血压变化。

注意事项

（1）切开颈部后要保持血管和神经的自然位置，保持动脉鞘的完整性，仔细辨认减压神经。

（2）在分离神经血管过程中，可滴加生理盐水保持神经生理活性。

（3）悬挂减压神经时不要牵拉过紧，引导电极应悬空，勿触及周围组织。

（4）尽量将周围减压神经上的结缔组织分离干净，以免增大引导电阻。

（5）分离血管和神经时尽可能用玻璃分针，不要用金属器械，以免损伤血管和神经。

（6）插管应固定牢固，以防在实验过程中滑脱，插管方向应与动脉保持一致，防止管口堵塞或管尖刺破管壁。

（7）每项实验完成之后必须等待血压基本恢复稳定后再进行下一项观察。

思考题

1．在一个心动周期中，减压神经放电与血压的关系如何？

2．压力感受性反射完整的反射弧是什么？有何生理意义？

（冯丹丹）