实验十一 T-DNA插入突变体纯合体的鉴定
【实验目的】
1.熟练掌握植物基因组DNA快速提取的方法。
2.掌握利用PCR方法鉴定T-DNA插入突变体的方法。
【实验原理】
“三引物法”的原理如图1-7所示,即采用三个引物(LP、RP、LB)进行PCR扩增。野生型植株(wild type,WT)目的基因的两条染色体上均未发生T-DNA插入,所以其PCR产物仅有1种,分子量约900bp(即从LP到RP)。纯合突变体植株(homozygous lines,HM)目的基因的两条染色体上均发生T-DNA插入,而T-DNA本身的长度约为17kb,过长的模板会阻抑目的基因特异扩增产物的形成,所以也只能得到1种以LB与RP(或LP,根据TDNA在基因上插入的方向选择)为引物进行扩增的产物,分子量约410+ Nbp(即从LP或RP到T-DNA插入位点的片段,长度为300+Nbp。再加上从LB到T-DNA载体左边界的片段,长度为110bp)。杂合突变体植株(heterozygous lines,HZ)只在目的基因的一条染色体上发生了T-DNA插入,所以PCR扩增后可同时得到410+Nbp和900bp两种产物。电泳结果差异明显(如图1-7所示),能有效区分不同基因型的植株。此法的优点是可同时鉴定出纯合突变体并确证T-DNA的插入情况。
T-DNA序列上的引物如下。基因上的引物设计可以通过拟南芥网站http://signal.salk.edu/tdnaprimers.html自动生成,也可以根据自己的需要进行设计。一般进行鉴定的引物距离T-DNA插入的位置300bp以上为宜,即300+Nbp。
LB-Left border primer of the T-DNA insertion:
N:实际插入位点与侧翼序列之间的距离,一般为0~300bp; MaxN: TDNA在基因组上实际插入位点的最大范围,一般在300bp左右; pZone:用于设计引物RP和LP的合适区域,一般在100bp左右; Ext5,Ext3:指的是在MaxN和pZone之间的区域,该区域不适合设计鉴定引物RP和LP; LP:左侧鉴定引物; RP:右侧鉴定引物; BP: T-DNA边缘的引物; LB: T-DNA左侧边缘引物。
图1-7 “三引物法”鉴定T-DNA插入突变体的原理
(引自: http://signal.salk.edu/tdnaprimers.html)
>LBb1 of pBIN-pROK2 for SALK lines: GCGTGGACCGCTTGCTGCAACT>LBa1 of pBIN-pROK2 for SALK lines: TGGTTCACGTAGTGGGCCATCG
注:上述的引物仅限于来源于SALK公司的T-DNA插入突变体植株的鉴定。
【实验材料】
拟南芥T-DNA插入突变体植株和野生型植株。
【实验器材】
台式离心机、移液枪、研钵、1.5m l离心管、PCR仪、电泳仪、DNA电泳槽、凝胶紫外分析仪等。
【药品试剂】
提取缓冲液: 200mmol/L Tris-Cl(pH 7.5); 250mmol/L NaCl; 25mmol/L EDTA; 0.5% SDS; 70%乙醇;异丙醇; 10 mmol/L Tris-EDTA缓冲液(TE);灭菌水; DNA聚合酶(Taqase)及缓冲液; dNTP(10mmol/L); LBa和LBb引物;基因特异引物; 50×TAE等。
【实验内容与方法】
一、植物基因组DNA快速提取
操作参照《拟南芥实验手册》(Weigel and Glazebrook,2004)。
此方法提取的基因组DNA只适用于PCR的鉴定,不适合酶切和大片段基因的扩增。
1.取拟南芥一片叶片,置于1.5ml离心管中,加入400μl提取缓冲液。
2.用研磨棒研磨叶片,直至缓冲液变为绿色。
3.在台式离心机上13000r/min离心5分钟。
4.离心后将上清液300μl转移至一个新的1.5ml离心管中。
5.在上清液中加入300μl异丙醇,混匀后于室温下13000r/ min,离心5分钟。
6.弃上清液后,用70%乙醇润洗沉淀,并在室温下干燥沉淀。
7.100μl TE溶解沉淀,将制备好的样品保存在4℃冰箱中备用。
二、PCR鉴定
1.将下列溶液加入PCR管中,具体见表1-5。
表1-5 PCR鉴定拟南芥纯合体的反应体系(30μl反应体系)
反应条件: 94℃5分钟
30循环(94℃/1分钟,55℃/1分钟,72℃/2分钟);
72℃延伸10分钟。
【注意事项】
反应条件需根据所要扩增产物的大小和引物的性质进行合适的调整。
2.电泳并根据电泳的结果进行分析。
【思考题】
1.简述植物基因组提取需要注意的事项。
2.PCR方法鉴定拟南芥T-DNA插入突变体的原理是什么?
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