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菌种保藏试管要不要灭菌

时间:2023-02-09 百科知识 版权反馈
【摘要】:实验二十 菌种保藏一、实验目的掌握微生物菌种保存的方法。在菌种保藏之前,一定要设法保证菌种是典型的纯培养物。通常将在斜面上或半固体上生长的菌种直接放到2~10℃冰箱中保藏,使微生物在低温下维持其缓慢生长,当营养成分被逐步耗尽后应该重新移植于新鲜培养基上;如此间隔一段时间移植一次,这种保存菌种的方法就叫移植保藏法或传代培养保藏法。定期移植的间隔时间随微生物种类而定。
菌种保藏_病毒生物实验

实验二十 菌种保藏

一、实验目的

掌握微生物菌种保存的方法。

二、实验原理

按微生物菌种的特性选用最佳的保藏方法,使菌种不死、不衰、不乱。选用休眠体如分生孢子、芽孢等,并要创造一个低温、干燥、缺氧、避光和缺少营养的环境条件,以利于休眠体能较长期地维持其休眠状态,要使其新陈代谢处于最低水平,又不会死亡,从而达到长期保藏的目的。

方法主要有:斜面或半固体穿刺菌种的冰箱保藏法、石蜡油封藏法、沙土管保藏法、冷冻干燥保藏法和液氮保藏法等。

在菌种保藏之前,一定要设法保证菌种是典型的纯培养物。

三、实验方法

1.常用的简易保藏法——移植保藏法

常用的简易菌种保藏法包括斜面菌种保藏、半固体穿刺菌种保藏及用石蜡油封藏等方法,这些方法是一般实验室和工厂普遍采用的菌种保藏方法。

通常将在斜面上或半固体上生长的菌种直接放到2~10℃冰箱中保藏,使微生物在低温下维持其缓慢生长,当营养成分被逐步耗尽后应该重新移植于新鲜培养基上;如此间隔一段时间移植一次(一般为3个月),这种保存菌种的方法就叫移植保藏法或传代培养保藏法。定期移植的间隔时间随微生物种类而定。一般不产芽孢的细菌间隔时间较短,约2周至1个月移植1次。放线菌、酵母4~6个月移植1次。

石蜡油封藏法则是将灭菌的石蜡油加至斜面菌种或半养的菌种上,以减少培养基内水分蒸发,并隔绝空气,减少氧的供应,从而降低微生物的代谢。它放在4℃冰箱中一般可保藏一年至数年。

2.沙土管保藏法

(1)取河沙(其量决定于试验的要求)用40目左右的筛子过筛,除去粗颗粒和杂质,用10%的稀盐酸浸泡过夜或煮沸30min,倒掉酸水,用自来水冲洗至中性,去水后晒干或烘干,备用,也可以直接作沙土管保藏菌种用。

(2)取非耕作层的黄土,加自来水浸泡洗涤数次,直至中性,碾碎,用100目左右的筛子过筛,除去粗颗粒,备用,也可以直接作土壤管保藏菌种用。

(3)按1份黄土,3份沙的比例掺和均匀,装入10ml的小试管或冻存管中,每管约1~2g,塞上棉塞,15磅灭菌1h,放温室培养,使未杀灭的菌生长,48h后再15磅灭菌30min,这样培养、灭菌,再培养,再灭菌需进行两次,然后烘干备用。

(4)进行抽样无菌检查,每10支沙土管抽一支,先用接种环在营养肉汤琼脂平皿上画线做无菌检查,然后将砂土倒入营养肉汤培养基中作无菌检查,37℃培养48h观察,若仍有微生物生长,则需要将全部沙土重新灭菌,再抽样做无菌试验,一直到完全无菌,才可用于保藏菌种。

(5)选择孢子层生长丰满,菌苔良好的培养物,以无菌水洗下,制成孢子或细菌悬浮液,混合均匀。用无菌吸管吸取悬液,每支沙土管中加入0.1~0.5ml,以刚刚使沙土润湿为宜,用接种针搅匀,保藏放线菌可不制成悬液,直接用接种针挑取孢子拌入沙土管中。

(6)将沙土管放入真空干燥器内,用真空泵抽干水分,或在真空干燥器内再放入五氧化二磷,待五氧化二磷吸水成糊状时进行更换,直至沙土管干燥为止。

(7)抽样检验,10支接种的沙土管抽一支,用接种环取出少量沙土,接种于营养肉汤斜面和在营养琼脂平皿上画线,培养后观察细菌生长情况和有无污染,有的需对细菌或孢子计数,以观察保藏过程中菌种的存活情况,经检验无杂菌污染,存活情况良好的沙土管,可放冰箱或室内干燥处保藏,可以一年检验一次,此法适合于芽孢杆菌、放线菌及抗菌素和酶制剂工厂的菌种保藏,一般可保藏菌种2~10年不等。

3.薄膜保藏法

(1)将无色透明玻璃纸剪成2~4cm2纸片若干,以吸水纸做隔层,分层放置于培养皿内。用常规干热或湿热灭菌,也可用γ射线辐射(钴60)灭菌,剂量200万~5000万仑琴。取聚乙烯塑料薄膜用低频热合器粘合成4cm×6cm方形夹层菌种保藏袋,一端开口,采用多层塑料袋密封包装,用γ射线200万~500万仑琴灭菌;如果用耐高温塑料薄膜做成保藏袋,便可用湿热法103.4kPa 20min灭菌,上述灭菌后的材料,均需按常规做无菌试验,确证无菌,备用。

(2)配制保藏菌株所需培养基琼脂平皿:将待保藏的菌株制成细胞或孢子悬浮液(用无菌生理盐水),无菌操作将灭菌的玻璃纸片放在琼脂平皿上,用无菌吸管取已制备好的细菌悬液0.2ml滴加在琼脂平皿上,用无菌玻璃涂棒均匀涂布。细菌和酵母菌一般培养3天,霉菌7天,放线菌10~20天,使菌苔生长良好或孢子丰满。无菌操作将长菌玻璃纸片与培养基分离,制得“菌种薄膜”,并放置于灭菌的大试管中,塞好棉塞。

(3)在室温或低温(-20℃左右)下,将“菌种薄膜”连同试管在干燥器内减压干燥,干燥器内同时放入五氧化二磷吸水;减压干燥装置最好装有无菌空气过滤管,保障减压干燥后菌种薄膜不被污染。

(4)将已干燥的“菌种薄膜”以无菌操作放置于灭菌的菌种保藏袋内,挤压排除袋内部分空气,用低频热合器将开口密封。放冰箱或室温保藏。

(5)薄膜保藏的抽样检验同上实例所述,只是在折封保藏袋时,要用酒精棉球擦拭消毒袋的外表,再用无菌剪刀剪开袋的封口处。该保藏法的特点是微型化,使菌种便于邮寄。

4.冷冻真空干燥保藏法

(1)冻存管准备:冻存管103.4kPa(15磅/平方吋)30min灭菌,烘干后备用。

(2)保护剂牛奶:用脱脂牛奶即可。将脱脂牛奶55.2kPa(8磅/平方吋)20min灭菌备用。或者用脱脂奶粉配置成1%(重量比)浓度后,55.2kPa (8磅/平方吋)20min灭菌备用。

(3)菌悬液的制备及分装:取选好保藏的菌种斜面,加3~6ml无菌脱脂牛奶,刮下菌苔,勿将培养基刮下,用无菌毛细滴管吸此菌悬液加入已准备好的无菌冻存管,每管加0.2ml左右,塞好棉塞,另取2支冻存管装入0.2ml含2% CoCl2的牛奶(粉红色)作指示瓶。

(4)预冻:取500ml烧杯一个,内铺4层纱布,倒入50ml 95%的乙醇,将上述装有细菌悬液的冻存管放入烧杯内,再放入200g左右的干冰,这时温度下降到- 70℃左右,牛奶菌悬液在1min内冻结。也可将牛奶菌悬液置于液氮罐上层的气相中或低温冰箱(-80℃)中冻结。

(5)真空干燥:干燥瓶在冷冻槽中预冷后,取出冻存管,擦掉外面的冰,立即放入干燥器内,开启真空泵,使真空度在15min内达到66.65Pa (0.5mmHg),随后逐渐达到13.33~26.66(0.1~0.2mmHg)Pa。约3h CoCl2指示瓶的颜色由粉红变为蓝色2~5h即可抽干,样品中的水分升华95%以上时,可见冻干的样品呈酥丸状或片状。样品干燥后从真空干燥器内取出冻存管时,应先缓慢地使真空干燥器内的大气压力逐渐平衡,然后再取出。现在实验室或工厂均有全自动真空干燥系统。

(6)测定水分:干燥后的样品中残留水分的测定有多种方法,用失重法较方便。

样品中水分%=失去的重量/样品的重量×100

残留水分在1%~3%的范围内,一般对保藏效果影响不大。

5.液氮超低温保藏法(一般情况下比较少)

(1)冻存管的准备:冻存管103.4kPa(15磅/平方吋)30min灭菌,烘干后备用。冻存管大小以容量1~2ml为宜。

(2)制备保护剂:配制20%甘油或10% DMSO水溶液,于112℃灭菌30min。

(3)制备细菌悬液:把单细胞微生物接种到合适的培养基上,并在合适的温度下培养到稳定期,对于产生孢子的微生物应培养到形成成熟孢子的时候,再吸适量无菌生理盐水于斜面菌种管内,用接种环将菌苔从斜面上轻轻刮下,制成均匀的悬液。

(4)加保护剂:吸取上述菌液2ml于无菌试管中,再加入2ml 20%甘油或10%DMSO,保护剂终浓度分别为10%或5%。

(5)分装菌液:将加有保护剂的菌液分装到冻存管中,每管装0.5ml不产孢子的丝状真菌,在做平板培养后,可用直径0.5mm的无菌打孔器将平板上的菌丝连同培养基打下若干个圆形菌块,然后用无菌镊子挑2~3块至含有1ml 10%甘油或5% DMSO的冻存管中。

(6)冷冻:将冻存管放于-40℃低温冰箱中冷冻约1h后再放入液氮中保藏。

(7)保藏:液氮超低温保藏菌种,可放在气相或液相中保藏。气相保藏,即将冻存管放在液氮罐内液氮液面上方的气相(-150℃)中保藏。液相保藏,即将冻存管放入提桶内,再放液氮(-196℃)中保藏。

(8)解冻恢复培养:将冻存管从液氮罐中取出,立即放入37℃水浴中解冻,约3min即可融化。可吸0.1ml融化的悬液,作定量稀释后进行平板计数,然后与冻结前计数比较,计算出存活率。

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