(一)实验目的
利用流式细胞仪把标记上荧光的细胞从其他细胞中区分出来,进行培养、分析或其他生物学研究。细胞无菌分选比较容易便捷的获得高纯度,高活性的细胞。回收的细胞在无菌的条件下可继续培养。
(二)仪器试剂
1.流式细胞仪 波长选择:488nm、405nm。
2.特定荧光抗体。
3.4%BSA溶液 使用1×PBS作为溶剂;无菌的4%BSA包埋收集管;无菌鞘液。
(三)实验流程
实验过程基本同上,但存在以下不同。
1.分选后的细胞还需要继续培养,需要预先用无菌的4%BSA包埋收集管(在无菌收集管中,加满4%BSA,并放置于4℃至少1h,使用前倒掉包埋液)。
2.所有用到的试剂,包括鞘液,都必须无菌处理;在分选前及分选过程中,必须进行严格无菌操作,机器需要经过乙醇冲洗及无菌PBS冲洗的过程。
(四)细胞分选及无菌分选注意事项
1.若所要分选的是悬浮细胞,要求细胞总数大于1×107/管,直接收集细胞液。
2.必须有对照细胞。如需要筛选的是GFP阳性的细胞,必须提供没有转染的同种细胞。
3.在前期准备工作中一定要保持环境、仪器管路无菌。紫外灯消毒外部环境,鞘液高压灭菌,管路乙醇冲洗后要用无菌鞘液反复冲洗。必要时可在培养时加适量抗生素。
(五)分选
1.分选获取示意图,见图1-18。
2.分选通道选择示意图,见图1-19。
图1-18 收集管获取分离细胞
图1-19 淋巴细胞分型
可根据A图中不同通道的设定来分选出想要的细胞群(B),R1.(CD3-CD4-)细胞;R2.(CD3+CD4-)细胞;R3.(CD3+CD4+)细胞;R4.(CD3-CD4+)细胞
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