六、细菌纯种分离的操作方法
细菌纯种分离的方法有两种:稀释平板法和平板划线法。
(一)稀释平板分离法
1.取样
用无菌锥形瓶到现场取一定量的活性污泥或土壤或湖水,迅速带回实验室。
2.稀释水样
工作前,用镊子取出一块酒精棉球擦手、镊子以及工作台,待工作台干净后,点燃酒精灯。
将1瓶90ml和5管9ml的无菌水排列好,按10-1、10-2、10-3、10-4、10-5及10-6依次编号。在无菌操作条件下,用10ml的无菌移液管吸取10ml水样(或其他样品10g)置于第一瓶90ml无菌水(内含玻璃珠)中,将移液管吹洗3次,用手摇10分钟将颗粒状样品打散。即为10-1浓度的菌液。用1ml无菌移液管吸取1ml的10-1浓度的菌液于一管9ml无菌水中,将移液管吹洗3次,摇匀即为10-2浓度菌液。用同样的方法依次稀释到10-6。稀释过程如图8-6所示。
图8-6 样品稀释过程
3.平板的制作
取10套无菌培养皿编号,10-4、10-5、10-6各3个,另1个为空气对照。取1支1ml无菌移液管从浓度小的10-6菌液开始,以10-6、10-5、10-4为序分别吸取0.5ml菌液于相应编号的培养皿内(注:每次吸取前,用移液管在菌液中吹吸使菌液充分混匀)。或者直接用微量移液枪移取0.5ml菌液,每移一次换一个枪头,移取液体前,用70%乙醇对进入试管的枪体进行擦拭消毒(图8-7)。
图8-7 倒平板与接种
加热融化已灭菌的培养基,当培养基冷却至45℃左右时,进行无菌操作倒平板,具体过程见图8-7。倒入培养基后将培养皿平放在桌上,顺时针和反时针来回转动培养皿,使培养基和菌液充分混匀,冷凝后即成平板,倒置于30℃恒温箱中培养48小时,然后观察结果(注:若在无菌室内操作,倒平板按图8-8操作)。
取“对照”的无菌培养皿,待平板待凝固后,打开皿盖10分钟后盖上皿盖,倒置30℃箱中培养,48小时后观察结果。
图8-8 倒平板
(二)平板划线分离法
1.平板的制备
将融化并冷至50℃的肉膏蛋白胨琼脂培养基倒入无菌培养皿内,使凝固成平板。
2.操作
用接种环挑取一环活性污泥(或土壤悬液等),左手拿培养皿,中指、无名指和小指手托住皿底,拇指和食指夹住皿盖,将培养皿稍倾斜,左手拇指和食指将皿盖掀半开,右手将接种环伸入培养皿内,在平板上轻轻划线(切勿破坏培养基),划线的方式可取图8-9中任何一种。划线完毕盖好皿盖,倒置30℃恒温箱中培养48小时后观察结果。
图8-9 平板划线分离方法
A.操作示意;B.平板分区5区法;C.平板分区3区法
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