【摘要】：对培养的细胞进行免疫细胞化学染色，可以用培养皿直接染色、盖玻片细胞玻片染色或树脂包埋后半薄切片染色。免疫组织化学技术已成为病理学诊断中不可缺少的辅助手段。细胞免疫组织化学过程中，脱片和固定处理不当常是造成阳性率低、重复性差的重要原因。细胞涂片经过一番前期处理，即可同病理组织学切片免疫组织化学一样进行免疫组化染色。
应用免疫组化方法可以对细胞抗原性物质进行准确、敏感的检测和定位。对培养的细胞进行免疫细胞化学染色，可以用培养皿直接染色、盖玻片细胞玻片染色或树脂包埋后半薄切片染色。对以上三种方法进行比较①培养皿内直接染色：染色效果较好，但抗体耗量大，而且如果是塑料平皿，不宜用二甲苯透明、封片，细胞进行高倍照相时有一定的困难；②盖玻片细胞玻片：需要抗体少，标本能按常规进行脱水、透明、封片，但盖玻片进行培养时，培养的细胞有选择性，而且细胞容易脱片；③半薄切片染色：实验操作较为复杂，但能像常规石蜡切片一样进行染色。
免疫组织化学技术已成为病理学诊断中不可缺少的辅助手段。但在细胞学诊断中，却因涂片标本脱片、细胞面积大、耗费试剂多、标本制作重复性差等原因，没有像组织标本那样常规开展。
细胞免疫组织化学过程中，脱片和固定处理不当常是造成阳性率低、重复性差的重要原因。普通细胞涂片细胞黏附性较差，进行免疫组化染色细胞容易脱片，可采用清洁后的玻片用多聚赖氨酸处理，并在丙酮中固定，可以防止脱片。细胞涂片经过一番前期处理，即可同病理组织学切片免疫组织化学一样进行免疫组化染色。
细胞学诊断大多数情况下只有在观察常规染色片后，才能决定是否需要进行免疫细胞化学染色，此时涂片已染色并无剩余白片，即使有剩余白片，也不能完全保证2张涂片中细胞的一致性。对已经HE染色的细胞学涂片可以脱胶、盐酸乙醇脱色、高锰酸钾氧化、草酸还原一系列过程后还原成白片再行免疫组化染色，这样可以保持原来细胞结构的完整性，这是一种回顾性研究的补救手段。
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