传统的PCR(标准PCR)通常只能扩增2~3kb以内的短片段,对5kb以上的长片段很难有效扩增。限制其扩增长片段的主要原因是:①因Taq DNA聚合酶缺少3'→5'核酸外切酶活性,有较高的错误掺入率,而合成4.1kb核苷酸可能导致1次框码移位,在产物链3'端出现错配碱基,促使链合成提前终止;②Tris缓冲液在温度升高时,pH降低,诱发脱嘌呤反应,使模板受损,导致长片段无法合成;③Taq DNA聚合酶在PCR过程中活力下降;④非特异性扩增干扰长片段的延伸。近年来发展起来的长片段PCR(long PCR)技术,针对上述限制因素将PCR反应体系进行了改良。已从人类基因组和λ噬菌体DNA中,成功地扩增出29.9kb和42kbDNA片段,有望成为一项实验室的常规方法。
1.模板 采用琼脂糖包埋细胞抽提法,获取高质量的模板DNA,以保证模板的完整性。
2.引物 应设计较长的引物,一般为21~34个核苷酸,可以使用较高的退火温度,减少错误引发,两个引物的解链温度应平衡,差别最好不要超过1℃。
3.酶 具有3'→5'外切酶活性(校正阅读功能)的DNA聚合酶可纠正复制时的错配,有利于长片段的延伸,但也存在破坏引物和单链模板的可能性。改良的方法是将无3'→5'外切酶活性的DNA聚合酶(如rTth)和低浓度有3'→5'外切酶活性的DNA聚合酶(如Pfu)组合使用。近来已采用酶的不同组合方式,实现了多种目的DNA的长片段扩增。其中以rTth与vent或Pfu组合效果最好,能够扩增出>5kb的DNA片段。
4.缓冲液 长片段PCR反应体系通过提高Tris的浓度,或改用Tricine缓冲液以增强缓冲能力,并上调体系的pH,起始控制在pH 8.8~9.2,使随温度上升而降低的pH得到补偿。另外,在体系中加入一定量的甘油、EDTA、Tween20、聚乙二醇、DMSO、明胶等,以降低模板解链温度和(或)提高DNA聚合酶的稳定性,从而促进长片段的扩增。
5.热循环参数 增加延伸时间,一般为1kb/min。提高退火温度,同时采用热启动,以减少引物错配及引物二聚体的形成,增加扩增的特异性和产物量。热循环后期,每个循环适当增加延伸阶段的时间,如在28~40个循环的后12~20个循环中,每次增加15~30s,以保证产物链充分延伸。
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