哺乳动物动脉血压调节

【实验目的】 了解哺乳动物动脉血压的直接描记方法，观察神经、体液因素及药物对动脉血压的影响，加深对动脉血压调节机制的理解。

【实验原理】 在整体中，心血管活动受神经与体液因素的调节。神经调节主要通过各种心血管反射来实现，其中较重要的是颈动脉窦和主动脉弓压力感受器反射，该反射的感受器、传入神经、神经中枢传出神经、效应器等任何一部分受到刺激都可通过心脏和血管功能的改变而影响血压。体液调节的因素主要有去甲肾上腺素和肾上腺素等，它们通过与心肌、血管平滑肌上相应受体结合而发挥生理作用。

此外，心血管活动还受药物的影响。其作用原理是这些药物均能与心肌、血管平滑肌上相应受体结合而发挥作用。

【实验用品】 家兔、生物机能实验系统、刺激电极、血压换能器，哺乳类动物手术器械一套、动脉插管、动物手术台、纱布、手术线、玻璃分针、注射器、小烧杯、滴管、铁支架、血压换能器夹持器。20％氨基甲酸乙酯溶液（或3％戊巴比妥钠溶液）、0.3％肝素溶液（或5％枸橼酸钠溶液）、0.01％酒石酸去甲肾上腺素溶液、0.01％盐酸肾上腺素溶液、生理盐水、1％酚妥拉明溶液、0.01％盐酸普萘洛尔溶液、0.01％硫酸阿托品溶液。

【实验步骤】

1．手术操作

（1）麻醉与同定：用20％ 氨基甲酸乙酯溶液按4～5ml／kg（或3％ 戊巴比妥钠溶液1ml／kg）通过兔耳缘静脉注射麻醉，然后仰卧位固定兔于手术台上。

（2）气管插管：剪去颈部的毛，沿颈部正中线切开皮肤5～7cm，分离皮下组织及肌肉，暴露和分离气管，在气管下方穿一条线备用，在甲状软骨下端2～3cm处作一倒“T”形切口，插入气管插管，用线将其结扎固定。

（3）颈部血管、神经分离：分离右减压神经（穿1根线）———右颈交感神经（穿1根线）———右迷走神经（穿2根线）———右颈总动脉（穿1根线），最后分离左颈总动脉3～4cm （穿2根线）备用。本实验使用左颈总动脉作动脉插管，右侧神经及右颈总动脉作刺激用，左侧神经作为备用。

（4）左颈总动脉插管：用动脉夹在左侧颈总动脉的近心端夹闭动脉，再结扎颈总动脉的远心端，结扎部位距动脉夹约3cm。在结扎线与动脉夹之间用眼科剪作一向心方向的斜形剪口，将连于血压换能器并充满抗凝剂（0.3％肝素溶液或5％枸橼钠溶液）的动脉插管向心脏方向插入动脉内，然后用线将其结扎固定。松开动脉夹后可见血液冲进动脉插管内，血压换能器连于调试好的生物机能实验系统，进入“动脉血压调节”实验模块。

2．观察项目

（1）描记一段正常动脉血压作对照。

（2）用动脉夹夹闭右侧颈总动脉阻断血流15s，观察兔血压变化的情况。

（3）刺激右减压神经，观察血压有何变化。

（4）刺激右侧迷走神经，观察血压变化；用两条线在该条神经中段分别作结扎，于两结扎线之间剪断神经，分别刺激其中枢端和外周端，观察血压有何变化。

（5）耳缘静脉注射0.01％盐酸肾上腺素0.5ml后，观察血压有何变化。

（6）耳缘静脉注射0.01％酒石酸去甲肾上腺素0.5ml后，观察血压又有何变化。

（7）耳缘静脉注射1％酚妥拉明溶液0.5ml，观察兔血压变化的情况。

（8）耳缘静脉注射0.01％盐酸普萘尔溶液10ml，观察血压和心率的变化。

（9）耳缘静脉注射0.01％硫酸阿托品0.2ml，观察兔血压的变化情况。

【注意事项】

1．最好用头皮针作耳缘静脉注射麻醉，麻醉时须缓慢。麻醉后用动脉夹固定建立静脉给药通道。

2．注意插管后应保持插管与动脉的方向一致，避免插管将动脉壁刺破。

3．在实验过程中应等待血压恢复到对照血压后再进行下一个项目的实验。

4．实验过程中要经常观察动物呼吸是否平稳、手术区有无渗血等，如出现问题，应及时处理。