【实验目的】 学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法，观察神经及体液因素对心血管活动的影响。
【实验原理】 心血管系统要受交感和副交感神经的支配。支配血管的神经分两类，一是交感缩血管纤维，二是交感神经舒血管纤维和副交感舒血管纤维。支配心脏和血管的神经都要受心血管中枢的控制，心血管中枢通过反射活动来调节心脏和血管的活动，改变心排血量和外周阻力，从而调节动脉血压的稳定。心血管系统的活动除了受神经的调节外还要受体液因素的调节，其中最主要的是肾上腺素和去甲肾上腺素。
【实验对象】 家兔。
【实验用品】 兔解剖台、哺乳动物手术器械、二道生理记录仪或计算机生物功能实验系统、气管插管、动脉夹、动脉插管、血压换能器、保护电极、有色丝线、纱布、注射器。生理盐水、20%氨基甲酸乙酯、肝素、1∶10 000肾上腺素、1∶10 000去甲肾上腺素、1∶10 000乙酰胆碱。
【实验方法及步骤】
1．接通所用仪器的电源 将压力换能器的导线端所选的通道，压力腔侧口接一个三通开关，压力腔正中口经一个三通开关接动脉托管，测压管道内充满肝素生理盐水。
2．麻醉及固定 取耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯溶液（剂量为5ml／kg体重），注射完毕将针头拔出，用棉球压住针眼片刻，以防出血。将兔仰卧位固定于兔解剖台上。
3．手术操作
（1）气管插管：先剪去颈前部的毛，沿颈部正中线做一5～7cm长的皮肤切口，分离皮下组织及肌肉，暴露和分离气管，在气管下方穿一条粗线备用，寻找甲状软骨，在其尾端2～3cm处作一“⊥”形切口，插入气管插管，用线将其结扎固定。
实验图9 颈部神经血管结构
（2）分离颈部的神经和血管：在颈部的两侧先辨认清楚颈总动脉、迷走神经、交感神经和减压神经，然后将其分离（实验图9）。在3条神经中迷走神经最粗，交感神经次之，减压神经最细。分离后在3条神经的下方各穿以不同颜色的丝线备用，颈总动脉下穿2条丝线备用。
（3）动脉插管：在左侧颈总动脉的近心端夹一个动脉夹，再结扎颈总动脉的远心端，结扎部位距动脉夹之间的距离至少2cm。在结扎线与动脉夹之间用眼科剪做一向心方向的斜行切口，在连于血压换能器的细塑料管内注入抗凝剂（0．5%肝素生理盐水或6%枸橼酸钠），再把细塑料管向心脏方向插入动脉切口内，然后用备用结扎线将其结扎固定。松开动脉夹后可见血液冲进动脉插管内，压力换能器连于二道生理记录仪或生物功能计算机处理系统。
【观察项目】
1．记录动脉血压的正常曲线，观察血压与心率的变化。
2．用动脉夹夹闭右侧颈总动脉10～15s观察血压与心率的变化。
3．待血压基本稳定后，由耳缘静脉注入1∶10 000肾上腺素0．2ml观察血压与心率的变化。
4．待血压基本稳定后，由耳缘静脉注入1∶10 000去甲肾上腺素0．3ml观察血压与心率的变化。
5．待血压基本稳定后，由耳缘静脉注入1∶10 000乙酰胆碱0．1ml观察血压与心率的变化。
6．待血压基本恢复正常后，在游离的减压神经的中部做双重结扎，在两结扎点的中间切断减压神经，分别用中等强度电剌激中枢端和周围端，观察血压与心率的变化。
7．待血压基本稳定后，结扎并剪断右侧迷走神经，用电剌激外周端，观察血压与心率的变化。
【注意事项】
1．麻醉药物注射的剂量要准确，速度宜慢。如实验时间长动物苏醒，可适量补充麻醉药。
2．手术过程中要尽量避免损伤血管，及时止血保持术野的清晰，否则会影响辨认神经。
3．减压神经较细，要注意保护，实验中要经常滴加生理盐水，防止干燥，同时要避免过度牵拉神经。
4．分离血管、神经时切勿使用有齿镊。在实验过程中，要始终保持动脉插管与动脉的方向一致，防止刺破血管或引起压力传递障碍。
5．每次静脉注射完药物后应立即推注0．5ml生理盐水，把管道内的药物推入血管内，同时应注意保护耳缘静脉。
6．实验时要注意对比每项实验前后的血压和心率的变化。
7．实验结束后，必须结扎颈总动脉近心端，然后再拔出动脉插管。
（姜德才）
免责声明：以上内容源自网络，版权归原作者所有，如有侵犯您的原创版权请告知，我们将尽快删除相关内容。
