【摘要】：固定液首选PCF固定液，即重铬酸钾2.5g、氯化汞5g，用蒸馏水配成100ml的混合液，固定骨髓组织时与40%甲醛液按4:1混合，一般固定12～48h。PCF固定液可充分固定中性粒细胞的颗粒，有利于区别粒细胞和单核细胞，对其他细胞的固定效果也较好，缺点是穿透力弱，固定时间长，染色时要脱去汞色素。因PCF固定液毒性大，临床上也用乙醇甲醛固定液来固定骨髓组织。
骨髓活检标本制备的主要程序包括取材、固定、脱钙、脱水、塑料包埋、切片及染色。
（一）骨髓活检标本取材与固定
骨髓活检取材常采用髂后上棘，皮肤经消毒、局部麻醉后，将具有内芯的手柄插入针座和针管中，右手持活检针，垂直骨面以顺时针方向旋转进针至一定深度使活检针固定，握住手柄，拔出针芯，在针座后端连接1.5cm或2.0cm接柱，再插入针芯，按顺时针方向继续进针，针管前端的沟槽可将骨髓组织断离；拔出活检针，取出针芯及接柱，再插入针芯推出骨髓组织，标本立即放入固定液送检。
固定液首选PCF固定液，即重铬酸钾2.5g、氯化汞5g，用蒸馏水配成100ml的混合液，固定骨髓组织时与40%甲醛液按4:1混合，一般固定12～48h。PCF固定液可充分固定中性粒细胞的颗粒，有利于区别粒细胞和单核细胞，对其他细胞的固定效果也较好，缺点是穿透力弱，固定时间长，染色时要脱去汞色素。其次是Bouin固定液（饱和苦味酸水溶液75ml，40%甲醛溶液25ml，冰醋酸5ml）穿透力强，固定均匀迅速，一般固定30～60min，但其对红系细胞和粒系细胞胞质固定效果差。因PCF固定液毒性大，临床上也用乙醇甲醛（95%乙醇溶液90ml，40%甲醛溶液10ml）固定液来固定骨髓组织。
（二）标本制片与染色
骨髓组织用5%～10%的硝酸脱钙后脱水，再用塑料包埋技术制成2～3μm的半薄切片，这样处理的标本细胞收缩少，切片薄而利于观察细胞内部结构。通常采用苏木素-吉姆萨-伊红（HGE）染色，如有需要还可进行一些特殊染色，如Gomori网状纤维染色、Masson胶原纤维染色，也可进行组织化学染色，如铁染色、过碘酸-雪夫（PAS）染色等。
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