减压神经放电

实验七　减压神经放电

一、实验目的

1.学习引导减压神经放电的电生理学实验方法。

2.观察并记录动脉血压变化与减压神经放电之间的关系。

3.了解压力感受器的工作特性，加深对减压反射的理解。

二、实验原理

减压神经为颈动脉窦和主动脉弓血管壁上压力感受器的传入神经纤维。当动脉血压升高或降低时，压力感受器的传入冲动也随之增加或减少，通过中枢机制引起心率、心肌收缩力、心输出量、血管阻力等发生相应变化，使动脉血压降低或回升，从而调节血压相对稳定，这一反射称为减压反射。减压反射是保持动脉血压相对稳定的重要调节机制。与多数哺乳动物的减压神经不同，家兔的减压神经自成一束，在颈部与迷走神经、交感神经和颈总动脉一起走行于颈动脉鞘内，主要反映主动脉弓压力感受器感受压力刺激的情况。用电生理学实验方法可引导、显示、记录减压神经放电情况，并用监听器能监听到减压神经放电的声音。

三、实验对象

家兔。

四、实验器材

BL－420F生物信号采集处理系统、哺乳类动物手术器械1套、兔手术台、气管插管、动脉插管、压力换能器、神经放电记录电极、注射器、针头、纱布、玻璃分针等。

五、实验药品

生理盐水、医用液体石蜡、20%氨基甲酸乙酯、肝素（200U/mL）、1∶10 000去甲肾上腺素溶液、1∶10 000乙酰胆碱溶液。

六、实验步骤和观察项目

1.仪器装置

（1）将神经放电引导电极接到BL－420F生物信号采集处理系统第1通道上，记录减压神经放电。

（2）颈总动脉插管通过压力换能器输入到生物信号采集处理系统第2通道上，记录动脉血压曲线变化。

（3）打开计算机，启动生物信号采集处理系统，点击菜单“实验项目”，选用“减压神经放电”模块。

2.手术操作

（1）麻醉和固定 用20%氨基甲酸乙酯，从兔耳缘静脉缓慢注射，麻醉后，仰卧位固定于兔手术台上。

（2）分离减压神经 颈部备皮后，在正中做皮肤切口，钝性分离皮下组织及肌肉，暴露气管。沿气管两侧小心分离减压神经（如头发粗细）和颈总动脉，穿线备用。

（3）颈总动脉插管 静脉注射肝素（200U/kg）以抗血凝。分离左侧颈总动脉3cm左右，穿上2根线备用，远心端用线结扎，近心端用动脉夹夹闭。用小剪刀在结扎线处动脉壁剪一“V”字形切口，向心脏方向插入动脉插管，用备用的线结扎固定。

注意：插管应与血管方向一致，且将插管放置稳妥，以防扭转或插管尖端刺破动脉管壁。放开动脉夹，此时即可见血液冲入动脉插管。

（4）做保护皮兜并安置电极 用皮钳夹住颈部一侧切口边缘的皮肤，使皮肤向外翻做成一小皮兜，向内滴入温热的液体石蜡，浸没神经和电极，以防神经干燥，并起绝缘、保温作用。用玻璃分针轻轻地把减压神经放到记录电极上，用备用线提起减压神经并搭到引导电极的神经钩上，注意神经不可过度牵拉。引导电极应悬空并固定于电极支架上，不能触及周围组织，将接地线就近夹在皮肤切口组织上。

3.观察项目

（1）正常减压神经放电 减压神经伴随血压波动而呈现群集性放电，呈三角形，幅度先大后小，群集放电节律与心率同步，从监听器中可听到如火车开动样的“轰轰”声（图4－7－1）。

（2）耳缘静脉注射肾上腺素 注射1∶10 000肾上腺素0.2～0.3mL，观察减压神经群集性放电和动脉血压曲线的变化，并注意监听器声音变化。

（3）耳缘静脉注射乙酰胆碱 注射1∶10 000乙酰胆碱0.2～0.3mL，观察减压神经群集性放电和动脉血压曲线的变化，并注意监听器声音变化。

图4－7－1　减压神经放电

七、注意事项

1.分离神经时动作要轻柔，不要过度牵拉；分离后要注意及时滴加温热液体石蜡，防止神经干燥。

2.电极首先放在近中枢端，如果描记不出神经放电，再把记录电极往外周端移动。

3.保持神经与引导电极接触良好；引导电极不可触及周围组织，以免带来干扰。

4.麻醉程度不宜过浅，以免动物出现躁动，产生肌电干扰。

八、思考题

1.减压神经有什么作用？正常减压神经放电的基本波形有何特征？

2.静脉注射肾上腺素、乙酰胆碱后，减压神经放电频率、幅度有何变化？与血压的关系如何？

3.减压神经的放电活动与动脉血压之间有何关系？