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细胞毒性细胞杀伤功能测定

时间:2023-05-09 理论教育 版权反馈
【摘要】:能进入到增殖的细胞内,与细胞浆蛋白质牢固结合。当标记的51Cr细胞受到损伤或死亡之后,即可释放出51Cr。用淋巴细胞分离液分离单核细胞,加入ConA刺激细胞。此指标是评价机体细胞免疫水平的一种常用指标,特别是可测定肿瘤患者CTL杀伤肿瘤细胞的能力,常作为判断预后和疗效观察的指标之一。

实验31 细胞毒性T细胞杀伤功能测定

(Cytotoxic T lymphocyte(CTL) killing function test)

【目的】

初步了解51Cr释放法测定杀伤细胞功能的原理与一般过程。

【原理】

img40能进入到增殖的细胞内,与细胞浆蛋白质牢固结合。当标记的51Cr细胞受到损伤或死亡之后,即可释放出51Cr。51Cr辐射γ射线。51Cr释放法即用放射性同位素51Cr标记靶细胞,将标记的靶细胞与CTL细胞共同孵育,CTL细胞发挥杀伤功能,使靶细胞的细胞膜受到损伤,从而使胞质内容物释放到上清液中,靶细胞51Cr释放量与效应细胞活性成正比,因此测定培养上清液中放射性强度可以判断CTL细胞的杀伤活性。

【材料】

1.铬酸钠(img41):51Cr的物理半寿期为27.72d。

2.十二烷基硫酸钠(SDS):用无菌生理盐水配制成2%浓度。

3.靶细胞:实验时一般采用24~48h培养的靶细胞。

4.效应细胞:从人外周血(肝素抗凝)分离的单核细胞或小鼠脾细胞。

5.含15%NCS的RPM I 1640培养液及淋巴细胞分层液等。

【方法】

1.制备CTL细胞:按常规方法制备脾细胞悬液。用淋巴细胞分离液分离单核细胞,加入ConA刺激细胞。细胞浓度调整到1×107/ml。

2.靶细胞的制备与标记:取对数生长期的靶细胞,用Hanks液洗涤2次后用RPM I 1640培养液悬浮细胞,然后调细胞浓度至2×106/ml,取1×106/ml细胞0.5ml,加入51Cr 100uci混匀后置37℃、5%CO2温育2h,每30min轻轻振摇一次。用细胞培养液洗涤细胞3次后调细胞浓度至1×106/ml备用。

3.细胞毒试验:取上述CTL细胞悬液1m l置聚丙烯试管中,加入靶细胞悬液0.1m l,设相应对照管。

4.置37℃、5%CO2中培养4h后离心,每管取上清液0.5m l。

5.将上清液置γ计数器中,测定其放射性(cpm值)。

【结果】

测定每管cpm值,依下式计算:

img42

注:自然释放管以1ml RPM I 1640培养液代替相应细胞悬液。

最大释放管以1ml 1%NP-40液代替相应细胞悬液。

【注意事项】

1.根据预试验确定效应细胞/靶细胞的最佳比例。

2.注意防护同位素放射性污染。

【临床意义】

此指标是评价机体细胞免疫水平的一种常用指标,特别是可测定肿瘤患者CTL杀伤肿瘤细胞的能力,常作为判断预后和疗效观察的指标之一。

【思考题】

哪些细胞具有杀伤功能?有何区别?

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